Responsable d'équipe
L’objectif principal de notre groupe de recherche est de mieux comprendre les interactions hôte-pathogène dans la tuberculose aux niveaux moléculaire et cellulaire, de la découverte de nouveaux gènes de virulence chez M. tuberculosis à l’identification des mécanismes immunitaires impliqués dans la défense de l’hôte contre le pathogène, avec l’objectif de proposer de meilleures stratégies pour contrôler la maladie.
Nous étudions les interactions hôte-pathogène dans la tuberculose, avec un intérêt particulier pour l'immunité antituberculeuse et pour les liens qui unissent évolution, physiologie et virulence chez M. tuberculosis.
Notre recherche porte sur l’exploration des liens entre le métabolisme et la virulence du bacille de la tuberculose, Mycobacterium tuberculosis, et sur la manière dont ces liens ont évolué au cours de l’évolution. Nous utilisons le criblage de bibliothèques de mutants par transposition (Tn-seq) pour identifier les gènes et les voies impliqués dans les interactions hôte-pathogène dans la tuberculose. Notamment, nous avons identifié un nouveau mécanisme de contrôle immunitaire inné des pathogènes par intoxication au zinc et découvert des stratégies de résistance chez les mycobactéries pathogènes impliquant les P-ATPases. Actuellement, nous élucidons la fonction de plusieurs P-ATPases et de leurs métallochaperons dans la physiologie et la virulence de M. tuberculosis. De plus, nous employons l’analyse Tn-seq pour étudier comment M. tuberculosis s’adapte à divers stress imposés par l’hôte, en particulier l’hypoxie.
Notre laboratoire s’intéresse également à l’immunité innée et adaptative à la tuberculose. Plus précisément, nous étudions le rôle des récepteurs innés, en particulier les lectines de type C, et des glycannes exprimés par les cellules hôtes dans l’immunité anti-mycobactérienne. Par exemple, nous avons récemment découvert que la lectine de type C DCIR module l’immunité contre la tuberculose en maintenant la signalisation des interférons de type I dans les cellules dendritiques. Nous étudions les mécanismes moléculaires impliqués dans la signalisation de DCIR à travers des expériences biochimiques et (phospho)protéomiques.£
En outre, nous explorons le rôle des cellules T cytotoxiques dans la défense de l’hôte contre M. tuberculosis. Dans ce contexte, nous développons des approches d’imagerie et fonctionnelles pour déterminer quelles sous-populations de lymphocytes T ont un accès, une interaction et des propriétés fonctionnelles optimales pour cibler les cellules infectées par M. tuberculosis.
Enfin, dans le contexte de la co-infection TB/VIH, une hypothèse dominante est que l’infection des macrophages par M. tuberculosis module l’environnement inflammatoire local, favorisant la réplication du VIH-1. Nous utilisons actuellement diverses approches in vitro pour simuler cet effet « bystander » provenant des sites d’infection par M. tuberculosis, dans le but de disséquer les mécanismes moléculaires et cellulaires qui augmentent la susceptibilité des monocytes et macrophages humains à l’infection par le VIH-1. En parallèle, nous corrélons nos résultats in vitro avec des observations in vivo en étudiant les lésions pulmonaires chez les primates non humains et en analysant des échantillons humains, y compris des sérums et des fluides d’épanchement pleural. Notre objectif ultime est d’identifier de nouvelles cibles avec un potentiel diagnostique et thérapeutique pour traiter la comorbidité entre le SIDA et la tuberculose.
Claude Gutierrez (PR-Émérite, UPS)
Denis Hudrisier (PR CE, UPS)
Geanncarlo Lugo (DR2, CNRS)
Fabien Létisse (PR, UPS)
Olivier Neyrolles (DR CE, CNRS)
Yannick Poquet (MCU HC, UPS)
Yoann Rombouts (CR, CNRS)
Philippe Vogeleer (MCU, UPS)
Nelly Gilles
Florence Levillain (IE, CNRS)
Bertille Voisin
Saurabh Chugh
Pierre Dupuy
Tejan Lodhiya
Louis Benastre
Maxime Caouaille
Wendy Le Mouellic
Sarah Monard
Maxime Pingret
Stella Rousset
Boudehen*, Faucher* et al. (2022) Mycobacterial resistance to zinc poisoning requires assembly of P-ATPase-containing membrane metal efflux platforms. Nat Commun
Corral et al. (2022) ILC precursors differentiate into metabolically distinct ILC1-like cells during Mycobacterium tuberculosis infection. Cell Rep
Souriant et al. (2019) Tuberculosis exacerbates HIV-1 infection through IL-10/STAT3-dependent tunneling nanotube formation in macrophages. Cell Rep
Troegeler et al. (2017) C-type lectin receptor DCIR modulates immunity to tuberculosis by sustaining type I interferon signaling in dendritic cells. Proc Natl Acad Sci USA
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Levillain*, Poquet* et al. (2017) Horizontal acquisition of a hypoxia-responsive molybdenum cofactor biosynthesis pathway contributed to Mycobacterium tuberculosis pathoadaptation. PLOS Pathog
The complete list of our publications is available through Pubmed.
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We are extremely proud of our former research assistants, PhD students and post-doctoral fellows who are now continuing their career in the best labs, enterprises and institutions in life sciences!